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实验室手册-第17章

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   一、试剂配制:
1、 DMEM+10%FCS
2、肝素2000U/ml
(4万单位溶于20mlPBS,过滤除菌;使用时0。1ml肝素+10ml血)
3 无Ca++、Mg++,PBS,灭菌
4、0。2%台盼蓝
5、PHA80ug/ml
0。8mgPHA+无菌10mlDMEM+10%FCS中;
    6、H—THYMIDINE
1mCi/ml的液体0。5ml___溶于50mlDMEM+FCS液中;终浓度为1uci/100ul。
    7、消化液20ml
    浓甲酸          15ml
    H2O2(30%)    5ml
    8、液闪液(所有器皿需烘干)
PPO         5g
POPOP      2。5g
溶于200ml无水乙醇+800ml甲苯;摇匀;
   9、MTT
二、外周血淋巴细胞PBM制备
1、 10ml肝素抗凝血;
2、 50g,4℃10—15min;
3、 收集上层液体;
4、 用DMEM+10%BFS洗一次;
400g   4℃  10min;
5、 吸弃上清,加5mlDMEM+10%BFS;
6、 活细胞计数(方法见前)
调整细胞浓度至2X107/ml
三、同位素法测定转化后的细胞活性
1、按下列方式分别加入淋巴细胞悬液和PHA:
   1           2             3             4              5               6  
A
B 
C
D
(1) 淋巴细胞浓度2X107/ml,每孔加入0。5ml;终浓度为1X107/ml;
(2) PHA浓度80  40  20  10  5  0ug/ml;每孔加入0。5ml;终浓度为40  20  10  5  2。5  0;
2、 37度CO2箱内培养56h;
3、 A、B两排每孔加1uci、’H…thymidine;
4、 继续培养16小时;
5、 收集A、B、C排细胞于离心管内;
6、 400g10min,弃上清;
7、 A、B排细胞沉淀用PBS洗一次,400g×10min;
8、 放射性测定;
(1)A、B离心馆开盖80度烘干,2…3小时;
(2) 每管内加消化液200ul;
(3) 盖好,90度水浴1小时;
(4) 每管取100ul置液闪瓶内;
(5) 每瓶加4ul闪烁液
(6) 液闪仪测定
刺激指数SI=   加PHA管的CPM均值
            ——————————————
                      对照管CPM均值

四、形态学方法:
1、 C排管内细胞沉淀物涂片
2、 GIEMSA——WRIGTH染色
3、 镜检
200个LC;计算转化率
          转化率(%)=转化LC/淋巴细胞总数
五、 MTT法
MTT法是一种四甲基偶氮唑盐'3—(4。5… dimethyl__thlazd…2…yl)…2。5…diphenyl…terrazolium  bromide'淡黄色,易溶液于水,MTT经活细胞线粒体中的脱氢酶作用后可氧化成蓝色结晶甲遥滓{经异丙醇作用后溶解显色,此法简易,准确且无同位素污染,以此法代替H’—TDR掺入法可进行细胞代谢活性及增殖反应的测定。
1、 不同处理的细胞加入96孔细胞培养板中,每孔100ul,37℃6%CO2培养。
2、 培养结束前4小时加入100ul/孔MTT试剂。
3、 培养结束后,取出培养板,4℃下1500r/m离心7分钟,甩去上清。
4、 立即加入10%盐酸一异丙醇,100ul/孔,充分吹吸混匀。
5、 于DG一3022型酶联免疫仪上测定OD570nm、OD650nm,求出OD550值。
第十二章 动物实验的一般规则
一、 依据实验目的要求,如病毒LD50、LD100、ID50等、细菌毒力测定、免疫效力试验、免疫血清制备等,选择不同种类、品系及不同饲养管理条件下的实验动物式实验用动物。常用的实验(用)动物包括小白鼠、大白鼠、豚鼠、绵羊、山羊、小香猪、他猪八戒、家兔、鸡、鸭、鹅等十几种。其中部分动物又有自然繁殖、近交系等、SPF与非SPF等区分。
二、依据动物骒病原体的敏感性或骒接种物的应答性不同,确定选用动物的年龄、性别,特别是使用动物的数量。
四、 不同实验研究类型所要求的动物数量不相同,现简述如下:
(一) 现况研究(Cross…sectional study)的一般样本大小可用下列公式计算:
        S.E.=PQ/N
        S.E.=标准误,P=某病的现患率或感染率,Q=1…P,N为样本大小。根据上述公式,可得到下列简便公式。
1、 若容许误差d=0。10P;95%可信水平t=2样本的感染率P与总体感染P之间有差异d。P…p=+(…)d=+(…)txS。E;S。E。=d/t。0。05水平;自由度为无限大时;t值约为2。
    P。Q         P。Q           t(2)PQ
N=————  =—————— =——————
            (S。E。)(2) (d/t)(2)        d(2)
             令d=0。1P
               2()PQ             4PQ                Q
           N=———————— =———————— =400X——
               (0。1P)()        0。02P()              P
2、 若容许误差d=0。15P;则
           Q
    N=178X——
                  P
3、 若容许误差d=0。20P;则
N=100XQ/P
4、 抽样调查肿瘤或其它发病率很低的疾病时,样本大小可参考Poisson分布期望可信限表。
(二) 病例对照研究(case…control  study),又称回顾性研究(retrospective  studies),研究样本大小可按下列分式计算。

           N=————————————
       
          Ka与Kb分别为a与b时正态分位数。可以队表中查得。
          P1和P2分别为估计 对照组与病例组有暴露史的比例。
          Q1=1…P1,  Q2=1…P2
          P=(P1+P2)/2,Q=1…P
         另,病例的暴露史可用下列公式估计:
         P2=(ORXP1)/(1…P1+ORXP1)
         OR为比值比。
                           附表  正态分布的分位数表
  KA( 单侧检验)     
  KC(单侧和双侧检验) Kb(双侧检验)
3。090
2。878                              
2。576    
   2。326    
   2。058     
   1。960    
   1。645    
   1。282     3。290
3。090
2。807
2。576  
2。326  
2。242  
1。960  
1。645  
(三) 队列研究(cohort study);又称前瞻性研究(prospective studies)。研究样本大小可用下列公式计算:


但这里P1为暴露组的发病率,P0为非暴露组的发病率。
Q1=1…P0  ,                   Q0=1…P0
P=(P0+P1)/2,                Q=1…P
如已知P0与估计某相对危险度(R),则
P1=RP0
(四) 实验研究
1、 对于发病率在5%以上的疾病作实验研究时,两组需要的动物数(N1及N2)可用下列公式计算:




可信限为95%。T值为1。96按2计算。式中P1为对照组的预期发病率,q1=1…p1;p2为实验组的预期发病率, q2=1…p2;N1为对照组需要的观察数。
设N1=N2,上式中仅N为未知,将p、q值分别代入公式即可得N值。
2、 对于发病率在5%以下,尤其是在1%以下的低发病率疾病的调查研究时,常采用泊松分布来推导样本数。
四、试验动物数的多少,除用上述公式计算和查表外,还应考虑以下几个因素:
1、 疾病的罹患率高低。
2、 实验措施有效率的高低。
3、 要求实验精确度的高低。
4、 要求实验组和对照组差异显著性的程度。
5、 两组的均衡性即齐同必的好坏。
6、 实验分组越多,则样本世纪数就需要增长率大。
五、 实验动物的分组必须考虑各组中动物的齐同性、随机性、重复性等,尽量减少实验田的偏差。实验动物的随机性分组方法详细参阅有关书籍,常见方法有完全随机设计、配对设计、随机单位组设计和拉丁方法设计和正交设计等。
六、 实验中必须设立严格合理的对照。通过对照组可取得研究指标的数据差异、清除被试因素以外的其它因素对结果的影响等。
七、 使用实验动物务必记住节约二字,需要什么样的动物园就使用什么样的动物园,不要越级使用。在周密的设计和论证的基础上,再提出实验田动物的订购计划。
八、 正式实验之前的充分准备工作可以起到事半功倍的效果,通常预试期可以达到下列目的:
1、 使试验动物园习惯于试验期的环境条件。
2、 做好试验动物的长势、驱虫、防疫注射等项准备工作以及对它们的健康观察。
3、 训练试验人员,熟练掌握操作规程。
4、 考核试验设计是否恰当和切实可行,发现部题及时纠正。
5、 通过预试期得到统计数据,对试验动物进一步审查、调整。一般要求预试期试验动物园头数应多于正式试验的头数;预试期的长短可因试验要求而定,一般为15——20天。
九、 实验结
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